115 警察特考三等 刑事鑑識人員類別 刑事化學 考古題詳解

115 年・警察特考・三等・刑事鑑識人員類別
試題代碼 刑事化學

第 一 題25 分

依托咪酯(Etomidate)類化合物在不計異構物下,目前已有 8 種之多,請回答下列問題:

(一) 請列出至 114 年底國內已查獲的 5 種(不計異構物),並畫出他們的化學結構。(15 分)

(二) 國內未將其主要代謝物列入尿液檢驗,請問主要代謝物為何?並說明原因與缺點。(7 分)

(三) 依托咪酯為何不在聯合國藥物與犯罪辦公室(UNODC)的新興影響精神活性物質(NPS)名單中?(3 分)

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核心觀念

本題考查依托咪酯類的共同化學骨架與酯基變化、依托咪酯在人體內的主要代謝途徑,以及 UNODC「新興影響精神活性物質」(NPS)的定義和資料庫收錄方式。

依托咪酯類的共同骨架可簡寫為:

Ph−CH(CH3)−N(imidazole)−C(=O)O−R\mathrm{Ph{-}CH(CH_3){-}N(imidazole){-}C(=O)O{-}R}

其中,苯乙基與咪唑環構成主要骨架;改變羧酸酯上的 RR 基團,即可形成多種結構類似物。回答結構題時,應清楚標出咪唑環上的取代位置,以及酯氧另一側的烷基。

解題方法

(一)列舉五種化合物並表示結構

作答時先列出化合物名稱,再用「共同骨架+取代基」表示各自結構。以下以常見的 5 種國內查獲品項作答;題目所稱「不計異構物」,表示丁托咪酯的正丁基、異丁基、仲丁基、第三丁基等異構物不分別計數。

化合物英文名稱咪唑羧酸酯的 RR 基
依托咪酯Etomidate乙基,−CH2CH3-\mathrm{CH_2CH_3}
美托咪酯Metomidate甲基,−CH3-\mathrm{CH_3}
丙帕酯Propoxate正丙基,−CH2CH2CH3-\mathrm{CH_2CH_2CH_3}
異丙帕酯Isopropoxate異丙基,−CH(CH3)2-\mathrm{CH(CH_3)_2}
丁托咪酯Butomidate丁基,−C4H9-\mathrm{C_4H_9}

五者均可依下列骨架繪出;將表中 RR 基接在酯氧後,即為各化合物結構:

Ph−CH(CH3)−N(imidazole)−C(=O)O−R\mathrm{Ph{-}CH(CH_3){-}N(imidazole){-}C(=O)O{-}R}

以依托咪酯為例,R=CH2CH3R=\mathrm{CH_2CH_3};美托咪酯為 R=CH3R=\mathrm{CH_3}。丙帕酯與異丙帕酯的分子式相同,但分別為正丙酯與異丙酯,兩者是結構異構物,不能混為同一結構。丁托咪酯則以丁基取代酯氧上的烷基;題目不計異構物時,列為一種即可。

(二)主要代謝物、原因與缺點

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第 二 題25 分

近年來分析技術的發展,使用氣相層析質譜儀(GC/MS)與液相層析串聯質譜儀(LC-MS/MS)已成趨勢。請回答下列問題:

(一) 請說明兩者主要離子化法之原理。(10 分)

(二) 請說明建立三段四極柱質譜儀高靈敏定量分析過程所需之掃描模式。(5 分)

(三) 請說明內標與同位素內標之差別。若無加入,對檢驗可能造成之影響,請列舉出 3 個。(10 分)

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核心觀念

本題考查質譜儀的離子化、三段四極柱串聯質譜儀(triple quadrupole, QqQ)的定量掃描模式,以及內標法的定量校正原理。GC/MS 常用電子游離法(EI);LC-MS/MS 常用電噴灑游離法(ESI)與大氣壓化學游離法(APCI)。QqQ 建立定量方法時,通常先找出適當的母離子與子離子,再以多重反應監測(MRM)進行定量。

(一)GC/MS 與 LC-MS/MS 主要離子化法原理

1. GC/MS:電子游離法(EI)

EI 是硬游離法,常用於可氣化且熱穩定的化合物。樣品在離子源中汽化後,以高能電子轟擊分子,使分子失去一個電子,形成分子自由基陽離子:

M+e−→M+⋅+2e−\mathrm{M + e^- \rightarrow M^{+\cdot} + 2e^-}

EI 能量通常約為 70 eV。過剩能量會使分子離子進一步裂解,產生特徵碎片離子。這些碎片可作為化合物的質譜指紋,有利於資料庫比對與定性;但分子離子有時較弱,且碎裂程度高。

2. LC-MS/MS:電噴灑游離法(ESI)

ESI 是軟游離法,適合極性、離子性或熱不穩定化合物,也適用於溶液中分析物。樣品溶液經高電壓噴霧形成帶電液滴;液滴在加熱與乾燥氣體作用下逐漸蒸發、縮小,電荷密度增加後,經液滴裂解與離子脫附,形成氣相離子。常見離子包括:

[M+H]+, [M−H]−, [M+Na]+\mathrm{[M+H]^+,\ [M-H]^-,\ [M+Na]^+}

ESI 可產生多電荷離子,適合分子量較大的化合物;離子型態會受流動相、pH、添加劑與基質影響。

3. LC-MS/MS:大氣壓化學游離法(APCI)

APCI 也屬軟游離法,適合中等極性、較不易以 ESI 游離的小分子。樣品溶液先霧化並加熱汽化,再由放電針產生試劑離子;試劑離子與分析物分子進行質子轉移或電荷交換,形成分析物離子,常見形式為 [M+H]+\mathrm{[M+H]^+} 或 [M−H]−\mathrm{[M-H]^-}。

**切入方式:**依樣品進樣型態區分:GC 樣品須先汽化,常用 EI;LC 樣品由液相流出,常用 ESI 或 APCI。EI 碎裂較多,適合指紋式定性;ESI、APCI 則以保留分子相關離子為主,適合串聯質譜分析。

(二)三段四極柱質譜儀高靈敏定量分析的掃描模式

QqQ 由第一四極柱 Q1、碰撞池 q2 與第三四極柱 Q3 組成。建立定量分析的核心模式是多重反應監測(MRM;亦稱 SRM):

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第 三 題25 分

指紋鑑定為刑事化學之一大重點,請回答下列問題:

(一) 請說明指紋鑑定中之明顯紋、成型紋及潛伏紋。(5 分)

(二) 潛伏指紋的厚度一般約為 0.10.1 微米,請列出其中有助於指紋鑑定的主要成分(至少 5 種)。(5 分)

(三) 請列舉其中 3 個主要成分之應用檢驗方法。(15 分)

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核心觀念

本題考查指紋印痕的可見狀態分類、潛伏指紋殘留物的化學組成,以及如何依成分選擇顯現方法。作答時應先區分「印痕如何形成、是否肉眼可見」,再將化學成分與可顯現該成分的方法配對。

(一)明顯紋、成型紋及潛伏紋

  • 明顯紋(visible/patent print):指紋因附著有血液、油漆、灰塵、墨水等有色物質,轉印於物體表面後,肉眼即可辨識的印痕。
  • 成型紋(塑性紋、立體紋;plastic print):手指按壓於蠟、油土、未乾塗料等柔軟或可塑物質,使表面留下凹凸立體形狀的印痕。
  • 潛伏紋(latent print):手指皮膚脊線上的汗液、皮脂等分泌物轉移到物體表面所形成,通常肉眼不易看見,須以粉末、化學試劑或其他方法顯現。

(二)潛伏指紋中有助鑑定的主要成分

潛伏指紋殘留物主要來自汗腺分泌、皮脂腺分泌及接觸到的外來物質;成分比例會因個人、接觸情形及沉積後的時間而改變。題目所稱約 0.10.1 微米,描述的是極薄的殘留層,作答重點在辨認其中可供顯現的成分。至少可列出:

  1. 胺基酸:如甘胺酸、絲胺酸、丙胺酸。
  2. 無機鹽類:如氯化鈉及其他含氯離子鹽類。
  3. 脂肪酸:如棕櫚酸、硬脂酸、油酸。
  4. 尿素。
  5. 乳酸。
  6. 蛋白質與胜肽。
  7. 蠟酯、三酸甘油酯等脂質。
  8. 角鯊烯、膽固醇。

其中胺基酸、氯化物及脂質,是最適合用來說明經典指紋顯現方法的成分。

(三)三種主要成分的應用檢驗方法

1. 胺基酸:茚三酮法

茚三酮(ninhydrin)與指紋殘留物中的胺基酸反應,生成紫色的茚三酮反應產物(Ruhemann’s purple),使脊線顯現。

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第 四 題25 分

請回答下列問題:

(一) 請說明 tt 檢定、FF 檢定及 QQ 檢定之用途並簡述其方法。(15 分)

(二) 何謂檢量線?如何製作檢量線?品管如何查核檢量線?(10 分)

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(一)tt 檢定、FF 檢定及 QQ 檢定之用途與方法

核心觀念

這三種檢定都以樣本資料推論母體特性,但用途不同:

  • tt 檢定:比較平均值,判斷兩平均值的差異是否具有統計顯著性,或檢查測定平均值與已知值是否相符。
  • FF 檢定:比較兩組變異數,判斷兩組測定的精密度是否有顯著差異;在變異數分析中,也可用來檢定多組平均值是否有差異。
  • QQ 檢定(Dixon 檢定):在一組少量測定值中,判斷最大值或最小值是否為離群值。

檢定時須先設定虛無假設 H0H_0、顯著水準 α\alpha(常用 0.050.05),再依檢定統計量、自由度及臨界值作判斷。若檢定統計量落入拒絕域,即拒絕 H0H_0。

tt 檢定:比較平均值

單一樣本平均值與已知值比較

若測得 nn 次,平均值為 xˉ\bar{x}、標準差為 ss,欲與已知值 μ0\mu_0 比較,計算:

t計算=∣xˉ−μ0∣s/nt_{\mathrm{計算}}=\frac{|\bar{x}-\mu_0|}{s/\sqrt{n}}

自由度為 n−1n-1。若 t計算>t臨界t_{\mathrm{計算}}>t_{\mathrm{臨界}},表示樣本平均值與已知值的差異達統計顯著;若未超過,則無足夠證據認定兩者有顯著差異。

兩組平均值比較

兩組樣本平均值分別為 xˉ1,xˉ2\bar{x}_1,\bar{x}_2。若假設兩母體變異數相同,可先合併變異數:

sp2=(n1−1)s12+(n2−1)s22n1+n2−2s_p^2=\frac{(n_1-1)s_1^2+(n_2-1)s_2^2}{n_1+n_2-2}

再計算:

t計算=∣xˉ1−xˉ2∣sp1n1+1n2t_{\mathrm{計算}}= \frac{|\bar{x}_1-\bar{x}_2|} {s_p\sqrt{\frac{1}{n_1}+\frac{1}{n_2}}}

自由度為 n1+n2−2n_1+n_2-2。若兩組資料是同一批樣品的前後測量或一一配對,則應先求每對差值,以差值進行配對 tt 檢定,而非直接套用獨立樣本公式。

FF 檢定:比較變異數

令兩組樣本變異數為 s12s_1^2、s22s_2^2,通常將較大者置於分子:

F計算=s大2s小2F_{\mathrm{計算}}=\frac{s_{\mathrm{大}}^2}{s_{\mathrm{小}}^2}

自由度分別為分子組的 n大−1n_{\mathrm{大}}-1、分母組的 n小−1n_{\mathrm{小}}-1。查表時須依自由度及檢定方向使用相應臨界值;若 F計算F_{\mathrm{計算}} 超過臨界值,表示兩組變異數有顯著差異,也就是精密度有顯著差異。若未超過,則無足夠證據認定兩變異數不同。

在變異數分析中,FF 值則以組間變異與組內變異之比計算;FF 值顯著時,表示多組平均值並非全都相同,但仍須進一步比較,才能確認哪些組別不同。

QQ 檢定:檢查離群值

先將 nn 個數據由小至大排序。若懷疑最小值或最大值為離群值,計算:

Q計算=可疑值與相鄰值的差全距=可疑值與最近數值的間距xmax⁡−xmin⁡Q_{\mathrm{計算}}= \frac{\text{可疑值與相鄰值的差}} {\text{全距}} = \frac{\text{可疑值與最近數值的間距}} {x_{\max}-x_{\min}}

例如懷疑最大值時,分子為最大值減去次大值;懷疑最小值時,分子為次小值減去最小值。依樣本數及顯著水準查 Q臨界Q_{\mathrm{臨界}}:

  • 若 Q計算>Q臨界Q_{\mathrm{計算}}>Q_{\mathrm{臨界}},可依該檢定規則判定可疑值為離群值並予以剔除。
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