108 高普考高考三級 生藥中藥基原鑑定 中藥成分分析 考古題詳解
第 一 題20 分
請說明超臨界流體萃取(Supercritical Fluid Extraction)用於中藥成分萃取之原理與優點。
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核心觀念
本題考查超臨界流體的定義、溶劑性質,以及這些性質如何用於中藥成分萃取。物質的溫度與壓力高於其臨界溫度 與臨界壓力 時,稱為超臨界流體。此時液相與氣相的界面消失,流體兼具氣體的高擴散性與低黏度,以及液體的溶解能力;其密度與溶劑力可藉由調整壓力、溫度控制。
中藥萃取常用二氧化碳作為超臨界流體。二氧化碳的臨界溫度約為 、臨界壓力約為 ,在較低溫度下即可進入超臨界狀態,適合用於熱敏性成分的萃取。
解題方法
作答可依「超臨界狀態的定義 → 溶劑性質 → 萃取操作 → 對中藥成分的適用性」說明:
- 將二氧化碳加壓、加熱至臨界點以上,使其成為超臨界流體。
- 超臨界二氧化碳流經中藥材,溶解適合其極性與溶解力的成分;其溶解能力主要受流體密度影響,可藉調整壓力、溫度改變選擇性。
- 萃取流體進入較低壓力的分離槽後,二氧化碳密度與溶解力下降,溶質析出而與流體分離;二氧化碳可回收再利用。
- 二氧化碳本身偏非極性,適合萃取脂溶性或低極性成分。若要萃取較極性的成分,可加入乙醇等極性修飾劑,調整溶劑極性與溶解力。
優點
第 二 題20 分
分離、純化後的成分以呈色試驗可判斷其可能的基本化學結構。下列呈色劑可用於判別何種成分?如何判定其為正反應?(每小題 5 分,共 20 分)
(一) Wagner's reagent
(二) Fehling reagent
(三) Ferric chloride reagent
(四) Labat reaction
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核心觀念
本題考「呈色反應與中藥成分結構類型的對應」,重點是記住試劑所偵測的官能基,以及正反應時的顏色或沉澱。分離純化後的成分可藉此初步推測結構;呈色試驗屬於定性判斷,不能單獨作為完整結構鑑定的依據。
解題方法與各小題判讀
(一)Wagner’s reagent
- 判別成分: 生物鹼。
- 反應原理: 試劑中的碘與碘化鉀形成多碘化物,與生物鹼形成難溶的離子對。
- 正反應判定: 出現紅棕色至棕色沉澱。
(二)Fehling reagent
- 判別成分: 還原糖,亦可用於檢出具有還原性的醛基。
- 反應原理: 鹼性條件下,還原糖將藍色的銅(II)離子還原為氧化亞銅。
- 正反應判定: 加熱後出現磚紅色氧化亞銅沉澱;未反應時溶液維持藍色。
(三)Ferric chloride reagent
第 三 題15 分
利用核磁共振氫譜(H-NMR)分析中藥成分時,請依序排出(由大至小)下列常見化合物官能基或溶劑之化學位移()大小。(每小題 5 分,共 15 分)
(一) 、、、
(二) 、、、
(三) 、、、
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核心觀念
本題考核質子核磁共振(H-NMR)中,氫核周圍的電子環境如何影響化學位移。化學位移以 表示,單位為 ppm;氫核周圍電子密度愈低,屏蔽效應愈弱,訊號愈向低場移動, 值愈大。吸電子原子、正電荷及芳香環或烯鍵的磁異向性,常使相鄰氫的化學位移增加。
解題方法
依序判斷每組甲基或溶劑質子的局部環境:
- 先看與甲基直接相連的原子或官能基;直接連到電負度高的原子,通常較去屏蔽。
- 再比較羰基、芳香環與烯鍵等造成的吸電子或磁異向性效應。
- 溶劑題則比較各分子中該類氫的典型化學位移。
(一)、、、
甲基直接連到電負度較高的原子時,連結鍵的電子密度被拉低,甲基氫較去屏蔽。氟的電負度最高,其次為氧、氮; 的甲基氫則沒有直接連到強吸電子雜原子。
由大至小排列為:
常見參考範圍約為 4.2 ppm、 3.3–3.8 ppm、 2.2–3.0 ppm、一般烷基 約 0.8–1.5 ppm。實際值會受分子結構、溶劑及測量條件影響。
(二)、、、
四者的甲基都處於較一般烷基更易去屏蔽的環境,但影響程度不同:
- :甲基直接連到帶正電的氮,去屏蔽最強, 最大。
- :芳香環的磁異向性使鄰接甲基去屏蔽,常見約 2.2–2.4 ppm。
- :甲基連於烯碳,受烯鍵磁異向性影響,常見約 1.6–2.0 ppm。
第 四 題20 分
DNA 分子標記鑑定方法—PCR(聚合酶鏈鎖反應)應用於中藥材檢驗。請詳述其原理、方法與應用。
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核心觀念
本題考查以聚合酶鏈鎖反應(polymerase chain reaction, PCR)進行中藥材 DNA 分子標記鑑定的原理、操作流程,以及在藥材真偽與親緣鑑別上的應用。PCR 是體外核酸擴增技術:利用一對引子界定目標 DNA 片段,在耐熱 DNA 聚合酶作用下,反覆進行變性、引子黏合與延伸,使目標序列快速增加。
DNA 序列可作為藥材的遺傳特徵。即使藥材外觀相近、經切片或粉碎而難以形態鑑別,仍可由適當組織萃取 DNA,再針對具有分類鑑別力的序列進行擴增與分析。常用標記包括葉綠體 DNA 的 rbcL、matK、trnH-psbA 等條碼區域,以及核糖體 DNA 的 ITS 區域;實際選擇須依藥材種類、近緣物差異與檢體 DNA 品質而定。
解題方法:原理與操作流程
PCR 的基本組成
反應液通常包含:
- 模板 DNA:由藥材檢體萃取而得,含有待鑑定的目標序列。
- 一對引子:正向引子與反向引子,分別與目標區段兩端的互補序列結合,決定擴增範圍。
- 耐熱 DNA 聚合酶:例如 Taq DNA polymerase,可在高溫變性後仍保有活性。
- dNTP:合成新 DNA 鏈的原料。
- 反應緩衝液與鎂離子:維持適當反應環境;鎂離子是聚合酶反應的重要輔因子。
PCR 三個循環步驟
- 變性(denaturation):通常約 –,使雙股 DNA 分離成單股。
- 引子黏合(annealing):降至適當溫度,使引子與模板上互補序列結合。溫度需依引子序列及其熔解溫度調整。
- 延伸(extension):通常約 ,由耐熱 DNA 聚合酶以模板為依據,從引子端延伸合成新 DNA 鏈。
完成一個循環後,目標片段成為下一輪的模板。理想情況下每循環約倍增,經 個循環後,產物量約與 成正比;實際反應會受試劑耗竭、酵素活性及副產物等因素影響,後期不會持續完全倍增。常見反應會進行約 – 個循環,並依目標片段長度與檢體狀況設定。
中藥材檢驗流程
- 取樣與 DNA 萃取:取藥材組織並萃取 DNA。中藥材常含多醣、酚類或其他抑制物,須適當純化;加工、加熱或長期保存也可能使 DNA 降解。
- 選擇鑑別標記並設計引子:選擇能區分目標藥材與近緣種、混用品或摻偽物的序列區域,設計專一性引子;
第 五 題25 分
液相層析管柱是中藥成分分析中最常使用的種類,依其性質主要有正相(normal phase)和逆相(reverse phase)兩種。請詳述其原理與應用。
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核心觀念
本題考查液相層析中固定相與移動相的極性配置,以及溶質因在兩相間分配、吸附能力不同而產生的分離效果。判斷正相或逆相,重點在固定相與移動相的相對極性:
- 正相層析(normal-phase chromatography):固定相較極性,移動相較不極性。
- 逆相層析(reversed-phase chromatography):固定相較不極性,移動相較極性。
溶質與固定相作用較強時,滯留時間通常較長;與移動相作用較強時,較容易隨流動相洗脫。此處的「正相/逆相」描述兩相的極性關係,不代表層析方向或流速。
解題方法與原理
作答時先分別交代固定相、移動相的極性,再說明樣品成分如何因極性與相間作用差異而分離,最後補上常見應用。
一、正相液相層析
正相層析使用極性固定相,例如矽膠、氧化鋁;移動相通常為低極性有機溶劑,並可逐步增加其極性以提高洗脫能力。成分與極性固定相的吸附或氫鍵等作用越強,滯留越久;與固定相作用較弱的成分則較早洗脫。
一般而言,在適合的正相系統中,較不極性的成分先洗脫,較極性的成分因與固定相作用較強而後洗脫。正相常用於脂溶性成分、異構物或極性差異明顯成分的分離,也可用於天然物粗分離及製備純化。
二、逆相液相層析
逆相層析使用非極性固定相,常見為鍵結烷基相,如 C18(十八烷基矽烷鍵結矽膠)或 C8;移動相則為水或緩衝液與甲醇、乙腈等有機溶劑的混合液。較疏水的成分與非極性固定相作用較強,通常滯留較久;較極性的成分較偏好極性移動相,通常較早洗脫。