112 警察特考三等 刑事鑑識人員 刑事生物 考古題詳解

核心觀念

Kastle–Meyer（KM）法是血跡的初步／推定性檢測，不是血液的確證試驗。它利用血紅素中血基質的類過氧化酶活性，催化過氧化氫氧化無色的還原型酚酞（phenolphthalin），使其轉變為粉紅至洋紅色的酚酞（phenolphthalein）。

反應可概略表示為：

其他具有氧化或類過氧化酶活性的物質也可能造成類似反應，因此陽性僅表示「檢體有推定血液的化學反應」，不能單憑此法認定一定是血液，也不能判定血液來源或個體身分。

解題方法

本題分別考查 KM 法的反應原理、證物操作順序，以及微弱反應的判讀。作答時須掌握兩個關鍵：先加試劑、後加過氧化氫；以及陽性不等於確證。

（一）檢測原理

KM 試劑含無色的還原型酚酞 phenolphthalin。若檢體含有血紅素，血紅素的血基質具有類過氧化酶作用，可催化過氧化氫產生氧化反應，使 phenolphthalin 氧化成粉紅色的 phenolphthalein。

因此，於加入過氧化氫後迅速出現粉紅色，代表有推定血液的反應。此法屬於催化性初步檢測，缺乏血液專一性；植物過氧化酶、某些氧化劑或金屬離子等干擾物也可能造成假陽性。

（二）證物檢測步驟

1. 選定疑似血跡處：先觀察並記錄刀具上的疑似血跡位置。以乾淨棉棒或適當取樣工具輕觸、擦拭少量痕跡，避免大面積破壞或污染證物。必要時以少量蒸餾水潤濕棉棒取樣。
2. 先確認試劑及操作有效：依實驗室程序確認 KM 試劑狀態，並使用適當陽性、陰性對照，以利判讀並排除試劑失效或操作污染。

核心觀念

毛細管電泳（capillary electrophoresis, CE）將 PCR 擴增後的 STR 片段依長度分離，再以螢光訊號產生電泳圖（electropherogram）。橫軸代表片段大小，縱軸代表螢光強度，通常以相對螢光單位（RFU）表示。各基因座的等位基因須依片段大小，並與等位基因階梯（allelic ladder）及內部尺寸標準比對後命名。

判讀的核心是：先確認檢測與品質控制有效，再判斷圖上的峰是否為可接受的等位基因訊號，最後依基因座判定基因型。單看某一個峰的存在與否，不能直接推定基因型。

解題方法：判定基因型前應確認的條件

1. 電泳與尺寸判讀有效 內部尺寸標準及等位基因階梯須符合實驗室的接受標準，才能可靠地換算片段大小並指定等位基因。若尺寸標準或等位基因階梯異常，該次分析的等位基因命名便缺乏可靠依據。

2. 陽性、陰性及空白對照符合標準 陽性對照應出現預期型別；陰性對照及試劑空白不得出現足以顯示污染的訊號。對照結果不合格時，樣本圖上的訊號不能逕認為來自待測檢體。

3. 訊號高於分析閾值 分析閾值（analytical threshold）是將可辨識訊號與基線雜訊區分的最低峰高標準。只有達到實驗室依驗證資料設定之閾值的峰，才進一步評估為等位基因或偽影；低於閾值的訊號不宜直接作為等位基因判讀。閾值須配合使用的試劑組、儀器及分析條件設定，並非所有實驗室共用固定 RFU 數值。

4. 排除非等位基因訊號及偽影 必須依峰的大小、位置、形態、相對高度及重複檢測情形，評估是否為拖尾峰（stutter）、染料訊號、尖峰（spike）、非模板核苷酸加成差異等偽影。偽影不得誤判為真正等位基因；

核心觀念

蝶竇是顱骨內的副鼻竇，經鼻腔與上呼吸道相通。蝶竇內發現液體，傳統上稱為 Svechnikov 徵象，可作為溺水鑑定的輔助所見；但它不是溺水的特異性或單獨確診徵象，須和解剖所見、檢驗結果及現場情況一併判讀。

解題方法

本題先區分蝶竇積水的來源：液體可能在生前吸入、死後被動進入，也可能來自屍體變化或原有病變。接著判斷其證據力：若遺體未明顯腐敗，蝶竇內有較多液體，且同時具備其他溺水徵象，才較支持生前落水並溺斃；單憑積水不能定案。

（一）形成蝶竇積水的可能原因

1. 生前溺水時吸入水液：溺水者在水中掙扎、呼吸或喘息，水液經口鼻、鼻咽進入呼吸道，再進入蝶竇。
2. 死後浸水造成液體被動進入：死者死亡後頭部浸在水中，外界水液仍可能進入鼻腔及蝶竇，因此蝶竇有水不必然代表生前溺水。
3. 瀕死期或其他死因造成的液體進入：瀕死喘息、肺水腫或呼吸道分泌物增加，可能使液體沿鼻咽部進入蝶竇；也須考慮嘔吐、胃內容物逆流等情況。
4. 腐敗及死後組織變化：腐敗、組織液化或其他死後變化可能產生或聚集液體，使蝶竇出現積液。

核心觀念

粒線體 DNA（mtDNA）控制區是非編碼區，含有高變異區，常用於輔助人別鑑定。mtDNA 每個細胞含量多、較耐受降解，適用於微量或陳舊檢體；但母系親屬間的 mtDNA 序列通常相同，因此鑑定力不如常染色體 STR，應作為輔助證據。

本題所問的檢測方法是 粒線體控制區 DNA 序列分析（DNA sequencing）：先以聚合酶連鎖反應（PCR）擴增控制區，再定序並比對序列，判讀其多型差異。常見分析區段包括高變異區 HV1、HV2，必要時也可納入 HV3。

解題方法與檢測原理

PCR 利用引子界定目標區段，在耐熱 DNA 聚合酶作用下，經反覆的變性、引子黏合與延伸，使控制區特定片段大量增加。定序則依序辨認擴增片段上的核苷酸排列，藉由與參考序列或對照樣本比對，找出鹼基置換、插入或缺失等序列多型。

檢測步驟

1. 檢體處理與 DNA 萃取：由待測檢體萃取 DNA，並依檢體狀況採取適當的純化或濃縮處理。
2. PCR 擴增控制區：選用涵蓋 HV1、HV2 等目標區段的引子，擴增 mtDNA 控制區；同時設置陽性與陰性對照，以確認反應有效並監控污染。
3. 確認擴增產物：以電泳或適當方法確認產物是否存在、大小是否符合預期；必要時純化產物，以去除未反應引子及游離核苷酸。
4. 定序：對 PCR 產物進行 DNA 定序，取得控制區的核苷酸序列。