107 高普考高考三級 環境檢驗 環境化學與環境微生物學 考古題詳解
第 一 題25 分
取 的湖水,利用 硫酸()進行滴定,所得滴定曲線如圖所示,請回答下列問題。
(原卷附 pH 值—滴定量曲線圖;縱軸為 pH 值,橫軸為 滴定量())
(一) 請說明湖水最初的 pH 值為 的原因為何?(5 分)
(二) 請由滴定曲線計算水中的酚酞鹼度與總鹼度。(10 分)
(三) 請問水中氫氧根()、碳酸根()及碳酸氫根()的濃度分別為何?(10 分)
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核心觀念
-
湖泊水體高 pH 值之成因(優養化與碳酸平衡): 天然未受污染之湖水 pH 值通常介於 。當湖水最初 pH 值高達 時,最主要之成因為水體「優養化(Eutrophication)」導致藻類與水生植物大量繁衍。藻類在白天進行強烈光合作用,劇烈吸收並耗盡水中之游離二氧化碳(),進而利用碳酸氫根()作為無機碳源,反應釋出氫氧根離子(): 促使碳酸系統化學平衡向右移動,產生過量 ,造成午後水體 pH 值飆升至 以上。次要可能原因則為工業強鹼性廢水(如造紙、電鍍、紡織)非法排入,或流經富含碳酸鈉等鹼性鹽類之地質礦脈。
-
鹼度(Alkalinity)之定義與滴定終點: 鹼度為水樣中能與強酸反應之中和能力總量,在環境檢驗中統一以碳酸鈣當量()表示。
- 酚酞鹼度(Phenolphthalein Alkalinity, ):滴定至 pH 約 之酸消耗量所代表之鹼度,此時水樣中之 完全被中和,且 完全轉化為 。
- 總鹼度(Total Alkalinity, ):繼續滴定至 pH 約 (甲基橙終點)之累積總酸消耗量所代表之鹼度,此時水樣中所有碳酸根與碳酸氫根均完全轉化為 ()。
- 計算公式: 其中 為滴定劑消耗體積()、 為硫酸滴定液當量濃度()、 為 之毫克當量重( 換算係數)、 為水樣體積()。
- 鹼度各物種(、、)之組成關係:
- 標準規範經驗法(NIEA W415 / APHA 2320 B):基於化學平衡,假設 與 不共存。當 時:
- 氫氧根鹼度
- 碳酸根鹼度
- 碳酸氫根鹼度
- 理論水化學平衡法:由原始水樣 可精確推導出游離之 ,再扣除游離強鹼後分配碳酸根與碳酸氫根。
解題方法
本題原試卷附有滴定曲線圖,滴定曲線之兩處反折點分別對應酚酞終點()與總鹼度終點()。依原卷圖形之標準判讀數值,滴定至 之硫酸消耗量為 ,滴定至 之累積硫酸消耗量為 。
(一) 說明湖水最初 pH 值為 10.5 的原因
- 主要原因:富營養化(優養化)與光合作用 湖泊水體優養化引發微藻與藍綠菌旺盛孳生。日間光照充足時,藻類進行劇烈光合作用,優先消耗水中溶解的游離 。當游離 被利用殆盡後,藻類利用碳酸酐酶將 轉化為 加以吸收,釋放出等當量的 : 水解反應進一步產生氫氧根: 此生物作用破壞了天然水體的大氣 溶解平衡,造成水體中 大量累積,使 pH 值上升至 。
- 次要原因:人為強鹼污染或地質影響
- 工業廢水:含有強鹼(如 、)之造紙、染整或鹼性清洗廢水未經妥善中和即排入水體。
- 地質特性:若湖泊位於高鹼度鹽鹼湖(Soda Lake)地質帶,溶出高濃度之碳酸鈉與碳酸氫鈉,亦會使水質呈現高 pH 值。
(二) 計算酚酞鹼度與總鹼度
代入水樣體積 、滴定酸濃度 ,滴定常數係數為:
-
酚酞鹼度(): 在滴定曲線第一反折點(),消耗硫酸體積 :
-
總鹼度(): 在滴定曲線第二反折點(),累積消耗硫酸體積 :
(三) 計算水樣中 、 及 之濃度
【解法一:環境檢驗標準規範經驗法(NIEA W415 判別法)】 比較酚酞鹼度與總鹼度之大小: 因 ,水中鹼度由碳酸根()與碳酸氫根()組成,氫氧根視為微量忽略:
- 以 當量濃度表示:
- 氫氧根鹼度:
- 碳酸根鹼度:
- 碳酸氫根鹼度:
- 換算為體積莫耳濃度( 或 )及離子質量濃度():
第 二 題10 分
大氣中一氧化氮()會與臭氧()反應生成二氧化氮()及氧氣():
假如此反應的反應速率常數()為:
各化合物的標準焓值(enthalpy)如下表:
| 化合物 | 焓(,) |
|---|---|
(一) 此反應的活化能(activation energy)為何?(5 分)
(二) 此反應的焓值為何?屬於放熱反應還是吸熱反應?(5 分)
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核心觀念
本題評量大氣化學反應中的「反應動力學」與「化學熱力學」兩大基本概念:
-
阿瑞尼斯方程式(Arrhenius Equation): 反應速率常數 與絕對溫度 ()及活化能 之關係式為: 其中 為頻率因子(frequency factor), 為理想氣體常數(), 為活化能(單位為 或 )。
-
反應熱與標準生成焓(Hess's Law / Standard Enthalpy of Formation): 反應的標準反應焓()可由生成物與反應物的標準生成焓()之差值計算:
- 元素基準態之標準生成焓:依熱力學定義,在標準狀態(、)下,元素的最穩定單質形態(如氧氣 ),其標準生成焓 。
- 吸/放熱判定:
- :系統釋放熱量,為放熱反應。
- :系統吸收熱量,為吸熱反應。
解題方法
(一) 計算反應之活化能()
-
對照題目給定式與理論式: 題目給定之速率常數式為: 阿瑞尼斯標準式為:
-
建立指數項之等量關係: 兩式指數部分之分子分母對應相等: 同乘 ,得:
-
代入氣體常數計算活化能: 取理想氣體常數 : 換算為常用之 :
(二) 計算反應之焓值()並判定吸放熱
-
反應方程式:
-
確認各物質之標準生成焓:
第 三 題15 分
利用比色法來測定溶液中污染物的濃度,在環境上為相當常用的分析定量技術。
通常比色法可依循比爾–朗伯定律(Beer-Lambert Law)的線性關係:
其中, 為消光係數, 為光路徑, 為濃度。消光係數又與吸光值()有關:
此方法也可用來定量大氣中臭氧對 UV-B(–)的吸收能力。下表所示為臭氧在不同 UV-B 波長範圍中的消光係數值。
| 波長()() | 消光係數()() |
|---|---|
(一) 如果大氣中臭氧的 值為 ,請計算波長為 抵達地面時的透光百分率。(5 分)
(二) 當大氣中臭氧的濃度降低 時,請問此時 及 波長到達地面的透光率變化為何?(5 分)
(三) 請說明此變化主要的原因。(5 分)
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核心觀念
本題結合「儀器分析/環境化學」中的比色法定量原理,與「大氣環境學」中臭氧層對紫外光的屏蔽效應,核心觀念如下:
- 比爾–朗伯定律(Beer-Lambert Law)之自然指數形式: 通常分析化學多採用以 為底的形式(),但本題題幹已嚴格定義為自然指數衰減形式: 其中:
- 為透光率(Transmittance),透光百分率則為 。
- 為消光係數(Extinction coefficient,單位為 )。
- 為光徑長(Path length)。
- 為吸收物質濃度(Concentration)。
- 的乘積代表有效光徑長與濃度的等效量(單位相當於 ,即大氣柱臭氧折算為標準狀態下的總厚度)。
- 微擾敏感度與透光率變化: 當濃度 變化為 時,新的透光率為: 評估透光率之變化可由兩個維度切入:
- 絕對變化量():(透光率數值或百分點的增減)。
- 相對變化率():。
- 光化學與光學厚度(Optical Depth)的波長相依性: 在紫外光 UV-B 範圍(),臭氧分子的電子躍遷吸收截面(消光係數 )隨波長增長而急遽下降。透光率受光學厚度 處於指數項的非線性影響,短波長與長波長的穿透行為表現出懸殊的敏感度差異。
解題方法與詳細推導
(一) 計算波長 抵達地面時的透光百分率
- 查表取得參數:
- 當 時,。
- 題目給定大氣臭氧之 。
-
計算指數項(吸光值 ):
-
計算透光率與透光百分率:
(二) 當大氣臭氧濃度降低 時,波長 及 到達地面的透光率變化
大氣中臭氧濃度降低 ,即新濃度為原本的 :
1. 波長 的透光率變化
- 查表得 。
- 原透光率:
- 濃度下降後的新透光率:
- 絕對變化量(): (絕對透光率依舊極小,到達地面之輻射量在巨觀上仍趨近於零)。
- 相對變化率(): (或以微分法一階近似:)。
2. 波長 的透光率變化
- 查表得 。
- 原透光率:
- 濃度下降後的新透光率:
- 絕對變化量():
第 四 題15 分
請比較 aerobic、anoxic、anaerobic 三種反應槽在定義上有何差異,並依此差異解釋出傳統設計之 A2O 三槽組合生物氮磷去除程序(依序第一槽 anaerobic,第二槽 anoxic,第三槽 aerobic,濃縮污泥迴流至第一槽)有何不利反應進行之處?可以如何修正?(15 分)
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核心觀念
本題評量環境微生物學與生物廢水處理工程之核心交集——**生物營養鹽去除(Biological Nutrient Removal, BNR)**中不同氧化還原環境的生化特性及槽體配置邏輯。核心觀念包括:
- 電子受體(Electron Acceptor)狀態之定義:以自由溶氧(DO)與結合態氧(主要為硝酸鹽 、亞硝酸鹽 )之有無,區分好氧(Aerobic)、缺氧(Anoxic)與厭氧(Anaerobic)環境。
- 聚磷菌(PAOs)之釋磷與攝磷機制:厭氧狀態下,PAOs 利用細胞內聚磷(Poly-P)水解釋放能量,攝取易生物分解性有機物(如揮發性脂肪酸 VFAs)合成為胞內聚羥基丁酸酯(PHB),並將正磷酸鹽釋出槽中;隨後於好氧槽內過量攝取水中磷酸鹽。
- 基質競爭效應:傳統 程序中,濃縮污泥迴流(RAS)將硝化產生的 帶入厭氧槽,導致脫硝菌(Denitrifiers)與 PAOs 競爭碳源(rbCOD / VFAs),嚴重抑制生物除磷效率。
解題方法
本題屬申論解析題,解答切入點分為三個邏輯層次推進:
- 第一部分(定義比較):以「最終電子受體(Terminal Electron Acceptor)」與「氧化還原電位(ORP)」為劃分基準,製作清楚對比,精準界定三種槽體之生化本質。
- 第二部分(機理解析不利之處):追蹤傳統 物質流向,指出二沉池底部的濃縮迴流污泥(RAS)攜帶好氧硝化產物()進入第一槽,破壞其「絕對厭氧」定義,轉化為「缺氧」狀態;進而推導脫硝菌掠奪有機基質,使 PAOs 缺乏足夠碳源合成 PHB,最終導致厭氧釋磷不足、好氧過量攝磷瓦解。
- 第三部分(工程修正對策):針對「阻絕硝酸鹽進入厭氧槽」之核心目的,提出學界與工程實務最常採用的改良程序(如 UCT 程序、JHB 程序及倒置 程序),詳細說明其污泥與混合液迴流路徑之變革。
選項分析
本題為申論題,非選擇題,無個別選項,評分關鍵在於三大提問之論述完整度:
- 槽體定義比較評分點:必須明確寫出「有無自由溶氧」與「有無硝酸鹽/亞硝酸鹽等結合態氧」,單純只答「有無空氣」無法取得滿分。
- 不利反應解析評分點:必須點出 進入厭氧槽引發的「基質競爭」問題,說明脫硝菌優先消耗 VFAs,使 PAOs 釋磷受到競爭性抑制。
- 修正策略評分點:必須給出具體且成熟的改良流程名稱(如 UCT 程序、JHB 程序),並明確交待「迴流點的改變」與「其為何能消除不良影響」。
解題技巧
- 「電子受體」是答定義的唯一標準:
- Aerobic:有分子態氧( 存在)。
- Anoxic:無分子態氧( 不存在),但有硝酸鹽態氧( 存在)。
- Anaerobic:無分子態氧,亦無硝酸鹽態氧( 且 )。
- 除磷破壞之因果鏈口訣:
- 修正方案之記憶核心:
- UCT 程序:將 RAS 改迴流至「缺氧槽」,再由缺氧槽拉一股「低硝酸鹽污泥」內迴流至厭氧槽。
- JHB(約翰尼斯堡)程序:在厭氧槽前增設「前置脫硝槽」,先將 RAS 中的硝酸鹽利用內生呼吸完全消耗,再進入厭氧槽。
【答案】
一、aerobic、anoxic、anaerobic 三種反應槽之定義差異
三種反應槽在生物廢水處理中的根本差異,在於**主要微生物代謝途徑所利用之「最終電子受體(Terminal Electron Acceptor)」與氧化還原電位(Oxidation-Reduction Potential, ORP)**的狀態不同:
| 槽體特性 | 好氧槽(Aerobic) | 缺氧槽(Anoxic) | 厭氧槽(Anaerobic) |
|---|---|---|---|
| 自由溶氧() | 存在(通常維持 ) | 嚴格缺乏() | 嚴格缺乏() |
第 五 題15 分
請解釋微生物進行 DNA 複製時,為何會出現 leading strand 以及 lagging strand 的差異?(15 分)
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核心觀念
本題評量原核生物(微生物)分子生物學之「DNA 半不連續複製」(Semidiscontinuous replication)機制,核心觀念包含:
- DNA 雙螺旋的反平行性(Antiparallel nature):DNA 的兩條互補母股走向相反,一條為 方向,另一條互補股為 方向。
- DNA 聚合酶催化專一性(Substrate specificity of DNA polymerase):微生物體內的 DNA 聚合酶(如大腸桿菌主要複製酶 DNA Polymerase III)進行聚合反應時,新生鏈必須藉由其既有核酸末端的 基團對去氧核苷三磷酸(dNTP)的 -磷酸進行親核性攻擊形成磷酸二酯鍵(Phosphodiester bond)。因此,新生股的合成方向被嚴格限制只能由 方向進行,自然界中不存在可由 方向合成新股的 DNA 聚合酶。
- 複製叉前進之單向性與幾何限制:解旋酶(Helicase)沿著雙股解開複製叉(Replication fork)朝單一方向前進,使得兩條反平行的母股在解旋處呈現相反的走向,因而衍生出「連續合成」與「不連續合成」之分工。
解題方法
申論此題時,應採取「結構基礎 酵素生理化學限制 複製叉動態幾何 兩股合成機制對比」的演繹架構進行作答:
- 第一步(結構與生化本質):點出 DNA 雙股互補且「反向平行」,並說明 DNA 聚合酶僅能由 催化新鏈延長。
- 第二步(空間動態衝突):說明解旋酶解開 DNA 形成複製叉時,複製叉僅朝單一方向開展。
- 第三步(前導股與延遲股之成因對比):
- 模板為 走向者,新生股以 方向延伸,與複製叉前進方向一致,可持續性「連續合成」,稱為前導股(Leading strand)。
- 模板為 走向者,新生股為符合 合成方向,必須朝著「背離複製叉」的方向延伸;隨著複製叉不斷開展,需反覆依附新引子分段合成,形成「不連續合成」的岡崎片段(Okazaki fragments),稱為延遲股(Lagging strand)。
- 第四步(後續酵素修飾):簡述延遲股後續需經由 RNA 引子切除、填補縫隙(DNA Pol I)與接合(DNA Ligase)的生化歷程。
選項分析
本題為高考三級環保技術類科之專業科目申論題,非選擇題,無選項。考生在面對此類名詞解釋與機轉比較題時,切忌僅以「一個走得快、一個走得慢」含糊帶過,評分關鍵在於能否精準寫出「反平行」、「 合成方向」、「複製叉行進方向」以及「岡崎片段」等關鍵生化專有名詞。
解題技巧
- 記憶與作答口訣:
- 「母股 ,子股 同向前進 前導股(連續)」
- 「母股 ,子股 反向倒退 延遲股(岡崎片段、不連續)」
- 圖解得分法:在國家考試試卷中,若文字說明後附上簡潔的「複製叉結構示意圖」(標註母股 與 端、新股合成方向、RNA Primer 及 Okazaki fragments),能展現完整的空間邏輯觀念,提高獲取滿分(15 分)的機會。
- 常見陷阱與盲點:
- 誤以為延遲股合成速度較慢。事實上,在細胞內透過「DNA 複製體(Replisome)」的迴圈模型(Trombone model),前導股與延遲股的合成速率是同步前進的,兩者差異在於合成的連續性,而非最終複製速度的顯著落差。
- 遺漏 DNA 聚合酶催化受質的化學限制(無法 de novo 合成且只能作用於 )。
【答案】
微生物(如原核生物)進行 DNA 複製時,會出現前導股(Leading strand)與延遲股(Lagging strand)之差異,主要肇因於 DNA 分子的反平行幾何結構 與 **
第 六 題20 分
學術單位由國外某污染場址分離出一株純菌,在實驗室規模反應槽中成功證明此菌具有四氯乙烯分解能力。該學術單位授權你在臺灣某四氯乙烯污染場址添加此菌並測試其處理效果,試問你如何以微生物相關之 culture-independent 分析技術來證明此純菌在現場真的有發揮預期的處理效果。(20 分)
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核心觀念
本題的核心在於污染場址生物復育(Bioremediation)中「生物注菌(Bioaugmentation)」之成效驗證,並嚴格限定採用**「非培養分析技術(Culture-Independent Techniques)」**。
- 傳統培養法之侷限性: 環境中高達 以上的微生物屬於「不可培養微生物」(Great Plate Count Anomaly)。且外加純菌進入現地複雜地層後,常因環境壓力、競爭或捕食而死亡、休眠或變形,傳統平板計數法無法準確計數,更無法直接反映現地代謝活性。
- 四氯乙烯(PCE)之生物還原脫氯機制: 在缺氧還原條件下,PCE 主要透過「有機鹵化物呼吸作用(Organohalide Respiration / Reductive Dehalogenation)」逐步脫氯還原: 分解效能取決於還原去鹵酵素(Reductive Dehalogenase, 如 PceA 等)之催化活性。
- 證明發揮現場效果之邏輯金字塔(證據鏈): 若要充分證明外加純菌在現場「發揮預期處理效果」,必須建立完整的三級證據鏈:
- 層級一(存在與生長):純菌在現地成功存活、定殖且族群量增長(DNA 層次)。
- 層級二(基因表現與活性):降解 PCE 之關鍵功能基因在現地被積極轉錄表現(RNA/蛋白質層次)。
- 層級三(因果關聯性):PCE 之消失與脫氯副產物之生成,直接源自該菌株之代謝活動(代謝物/同位素追蹤層次)。
解題方法
本題採取「多層次分子生物學非培養技術整合方案」,並搭配「現地對照設計」進行系統化論述:
一、 先期準備:建立純菌之專一性分子標記(Biomarkers)
在注菌前,於實驗室完成該純菌的全基因體或特定基因定序:
- 16S rRNA 基因專一性片段:作為鑑定該「物種/菌株身分」之生物標記。
- PCE 去鹵功能基因(如 pceA):作為證明其具備「PCE 還原脫氯功能」之功能性標記。
- 針對上述標記設計高專一性之引子(Primers)與螢光探針(TaqMan Probes)。
二、 證明菌體存活與定殖(DNA 層次:證明「存在」)
- 即時定量聚合酶連鎖反應(qPCR / Real-time Quantitative PCR):
- 定期抽取現地注菌井及下游監測井之地表下水與土壤樣本,萃取環境總 DNA(Environmental DNA, eDNA)。
- 利用專一性引子定量該菌之 16S rRNA 與 pceA 基因拷貝數(Gene Copy Numbers)。
- 判定標準:注菌後,若該菌專一性基因濃度維持在有效反應門檻(通常需達到 ),且隨地下水流向下游監測井擴散定殖,即證明該菌成功存活。
- 螢光原位雜合技術(FISH / Fluorescence In Situ Hybridization):
- 取未經培養的現地水樣或沉積物,以螢光標記之專一性寡核苷酸探針進行細胞雜合,於落射螢光顯微鏡或共軛焦顯微鏡下觀察。
- 判定標準:可直接辨識細胞形態、確認細胞膜完整性,並在不經培養下測定該純菌之原位活細胞數量與空間分佈。
三、 證明現地降解功能基因之表現(RNA 層次:證明「活性」)
DNA 存在僅代表菌體殘留(可能為休眠或殘留之游離死菌 DNA),無法證實其正在分解污染物;必須以轉錄層次證明活性:
- 逆轉錄即時定量 PCR(RT-qPCR / Reverse Transcription-qPCR):
- 快速採樣並以低溫及 RNA 穩定劑保存現地樣品,即時萃取環境總 RNA(eRNA)。
- 經 DNase 處理消除 DNA 干擾後,逆轉錄為 cDNA,定量 pceA mRNA 之表現量。
- 判定標準:偵測到大量 pceA mRNA 轉錄本(Transcript level),證明在現地環境壓力下,該純菌確實啟動了 PCE 還原脫氯之酵素合成機制。
- 環境總轉錄體學(Metatranscriptomics)或總蛋白質體學(Metaproteomics)(輔助驗證):
- 以高通量定序分析現地 mRNA 表現光譜,或以 LC-MS/MS 測定環境蛋白質體,確認 PCE 還原脫氯酵素(RDase)蛋白實際存在於現地胞外/胞內環境中。
四、 證明降解活性與污染物去除之因果關聯(受質追蹤與對照試驗)
- 穩定同位素探針技術(DNA/Protein-SIP, Stable Isotope Probing):
- 取現地微宇宙(Microcosm)或注菌現場之原位監測槽,投入碳-13 標定物(如 -PCE 或脫氯伴隨之 碳源/電子共給體如醋酸鹽)。
- 代謝後分離重同位素沉降帶(-DNA / -Protein),經 qPCR 或定序分析確認 被合成吸收到該外加純菌之生物分子中。